

Разработка методики количественной оценки молекул TREC и KREC в цельной крови и сухих пятнах крови методом цифровой ПЦР
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.10.55-62
Аннотация
Существует целый ряд патологических состояний, сопровождаемых сниженными показателями Т- и В-лимфоцитов. Оценка этих показателей является жизненно важной для новорожденных, так как без своевременной диагностики и терапии нарушение иммунитета может привести к инфекционным заболеваниям с тяжелым течением, инвалидизации и высокой летальности. Цель исследования заключалась в разработке высокочувствительного и прецизионного метода для подсчета количества наивных Т- и В-лимфоцитов на основе определения эксцизионных кольцевых молекул ДНК TREC и KREC методом цифровой ПЦР. В результате был разработан специфический набор праймеров и проб, позволяющий с высокой точностью определять количество молекул TREC и KREC, а также проводить подсчет количества ядросодержащих клеток. Предложенная методика демонстрирует высокую диагностическую специфичность и чувствительность. Методика может быть применена как скрининговая диагностика иммунодефицитных состояний новорожденных, так и для оценки иммунного статуса у взрослого населения при различных иммунопатологических состояниях.
Об авторах
А. А. СлепцовРоссия
634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, д. 10
Д. С. Орлов
Россия
634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, д. 10
С. А. Огородников
Россия
634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, д. 10
М. С. Назаренко
Россия
634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, д. 10
634050, г. Томск, Московский тракт, д. 2
Список литературы
1. van Zelm M.C., Szczepanski T., van der Burg M. et al. Replication history of B lymphocytes reveals homeostatic proliferation and extensive antigen-induced B cell expansion. J Exp Med. 2007 Mar 19;204(3):645-655. doi: 10.1084/jem.20060964.
2. Serana F., Chiarini M., Zanotti C. et al. Use of V(D)J recombination excision circles to identify T- and B-cell defects and to monitor the treatment in primary and acquired immunodeficiencies. J Transl Med. 2013 May 9;11:119. doi: 10.1186/1479-5876-11-119.
3. King J.R., Hammarström L. Newborn Screening for Primary Immunodeficiency Diseases: History, Current and Future Practice. J Clin Immunol. 2018 Jan;38(1):56-66. doi: 10.1007/s10875-017-0455-x.
4. Drylewicz J., Vrisekoop N., Mugwagwa T. et al. Reconciling Longitudinal Naive T-Cell and TREC Dynamics during HIV-1 Infection. PLoS One. 2016 Mar 24;11(3):e0152513. doi: 10.1371/journal.pone.0152513.
5. Törlén J., Gaballa A., Remberger M. et al. Effect of Graft-versusHost Disease Prophylaxis Regimens on T and B Cell Reconstitution after Allogeneic Hematopoietic Stem Cell Transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Jun;25(6):1260-1268. doi: 10.1016/j.bbmt.2019.01.029.
6. Barbaro M., Ohlsson A., Borte S. et al. Newborn Screening for Severe Primary Immunodeficiency Diseases in Sweden-a 2-Year Pilot TREC and KREC Screening Study. J Clin Immunol. 2017 Jan;37(1):51-60. doi: 10.1007/s10875-016-0347-5.
7. Гордукова М.А., Оскорбин И.П.., Мишукова О.В. и др. Разработка набора реагентов для количественного определения молекул днк trec и krec в цельной крови и сухих пятнах крови методом мультиплексной пцр в режиме реального времени. Медицинская иммунология. 2015;17(5):467-478. doi: 10.15789/1563-0625-2015-5-467-478.
8. Черемохин Д.А., Шинвари Х., Дерябина С.С. и др. Анализ уровней TREС и KREC в образцах сухой крови новорожденных разного гестационного возраста и веса. Acta Naturae. 2022; 14 (1): 101-108. doi: 10.32607/actanaturae.11501.
9. Huggett J.F., Cowen S., Foy C.A. Considerations for digital PCR as an accurate molecular diagnostic tool. Clin Chem. 2015 Jan;61(1):79- 88. doi: 10.1373/clinchem.2014.221366.
10. Hindson B.J., Ness K.D., Masquelier D.A. et al. High-throughput droplet digital PCR system for absolute quantitation of DNA copy number. Anal Chem. 2011 Nov 15;83(22):8604-10. doi: 10.1021/ac202028g.
11. Hall E.M., Flores S.R., De Jesús V.R. Influence of Hematocrit and Total-Spot Volume on Performance Characteristics of Dried Blood Spots for Newborn Screening. Int J Neonatal Screen. 2015;1(2):69- 78. doi: 10.3390/ijns1020069.
12. Слепцов А.А., Медведев С.П., Назаренко М.С.; Томский НИМЦ. Рекомбинантная плазмидная ДНК pGEM-TCRACsjTREC- sjKREC, содержащая нуклеотидныепоследовательности локуса гена Т-лимфоцитарного α-рецептора и сигнальные фрагменты эксцизионных колец Т- и В-клеточного рецепторов. Патент №2807806 РФ. МПК C12Q 1/6809 C12N 15/70. № 2022132020; Заявл.08.12.22; Опубл. 21.11.23., Бюл. № 33.
13. Zakharova I.S., Shevchenko A.I., Tmoyan N.A. et al. Induced pluripotent stem cell line ICGi038-A, obtained by reprogramming peripheral blood mononuclear cells from a patient with familial hyperch o l e s ter o l em i a d u e to com p o u n d h eter o z y g o u s c.1246C>T/c.940+3_940+6del mutations in LDLR. Stem Cell Res. 2022 Apr;60:102702. doi: 10.1016/j.scr.2022.102702.
14. Седых А.В., Сайтгалина М.А., Останкова Ю.В., Тотолян А.А. Сравнительный анализ наборов реагентов для выделения ДНК из сухих пятен крови. Медицинская иммунология. 2023;25(6):1453-1462. doi: 10.15789/1563-0625-CAO-2895.
15. Vidal-Folch N., Milosevic D., Majumdar R. et al. A Droplet Digital PCR Method for Severe Combined Immunodeficiency Newborn Screening. J Mol Diagn. 2017 Sep;19(5):755-765. doi: 10.1016/j.jmoldx.2017.05.011.
Рецензия
Для цитирования:
Слепцов А.А., Орлов Д.С., Огородников С.А., Назаренко М.С. Разработка методики количественной оценки молекул TREC и KREC в цельной крови и сухих пятнах крови методом цифровой ПЦР. Медицинская генетика. 2024;23(10):55-62. https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.10.55-62
For citation:
Sleptсov A.A., Orlov D.S., Ogorodnikov S.A., Nazarenko M.S. Development of a method for quantitative assessment of TREC and KREC molecules in whole blood and dried blood spots using digital PCR. Medical Genetics. 2024;23(10):55-62. (In Russ.) https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.10.55-62