Полиморфизм гена NOS1 и риск развития послеродового атонического кровотечения у женщин узбекской этнической группы
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.04.16-24
Аннотация
Введение. Учитывая рост распространенности послеродовых кровотечений, на сегодня проведено немало работ, посвященных патогенезу атонии матки. Тем не менее, изучение и поиск генов-кандидатов, участвующих в процессах развития атонии матки, остаются актуальными.
Цель: оценить связь генетического полиморфизма NOS1 (rs41279104) с дисфункцией миометрия и риском развития атонического послеродового кровотечения у женщин узбекской этнической группы.
Методы. Нами обследована 101 женщина с послеродовым атоническим кровотечением различной степени тяжести. Всем женщинам были проведены клинико-лабораторные и инструментальные исследования, включающие стандартные методики сбора анамнеза и физикального обследования. Для молекулярно-генетической детекции полиморфизма rs41279104 в гене NOS1 были использованы образцы геномной ДНК.
Результаты. При носительстве аллеля А риск развития послеродовой атонии матки у роженицы со сроком гестации 37-42 недели увеличивается в 1,7 раз (χ2 =4,2, OR=1,7, р=0,05). Однако эти выводы основаны на ограниченном объеме данных, и для подтверждения установленной ассоциации необходимо проведение дополнительных исследований с использованием более крупных выборок.
Об авторах
У. А. АшуроваУзбекистан
100109, г. Ташкент, ул. Фаробий, д. 2
Д. К. Нажмутдинова
Узбекистан
100109, г. Ташкент, ул. Фаробий, д. 2
К. Т. Бобоев
Узбекистан
100115, г. Ташкент, Чиланзарский р-н, ул. Арнасай, д. 16/ 1А
Список литературы
1. Making pregnancy safer. Geneva: World Health Organization, 2007 (https://www.who.int/maternal_child_adolescent/documents/newsletter/mps_newsletter_issue4.pdf).
2. Say L., Chou D., Gemmill A., et al. Global causes of maternal death: a WHO systematic analysis. Lancet Glob Health 2014;2(6): e323–e333.
3. Meher S. How should we diagnose and assess the severity of PPH in clinical trials? Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol 2019;61:41–54.
4. McEvoy A., Sabir S. Physiology, Pregnancy Contractions. 2022 Sep 19. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023 Jan–. PMID: 30422522.
5. Togliatto G., Lombardo G., Brizzi,M.F. The future challenge of reactive oxygen species (ros) in hypertension: From bench to bed side. Int. J. Mol. Sci. 2017; 18: 1988.
6. Ristow M. Unraveling the truth about antioxidants: Mitohormesis explains ros-induced health benefits. Nat. Med. 2014; 20: 709–711.
7. Ferreira C.A., Ni D., Rosenkrans Z.T., Cai W. Scavenging of reactive oxygen and nitrogen species with nanomaterials. Nano Res. 2018;10: 4955–4984.
8. Ganten D., Ruckpaul K. Nitrosative Stress. In Encyclopedic Reference of Genomics and Proteomics in Molecular Medicine; Springer: Berlin/Heidelberg, Germany, 2005.
9. Pérez-Torres I., Manzano-Pech L., Rubio-Ruíz M.E., Soto M.E., Guarner-Lans V. Nitrosative stress and its association with cardiometabolic disorders. Molecules 2020; 25: 2555.
10. Förstermann U., Sessa W.C. Nitric oxide synthases: Regulation and function. Eur. Heart J. 2012; 33: 829–837.
11. Feng Q., Hedner T. Endothelium-Derived relaxing factor (EDRF) and nitric oxide (NO). II. Physiology, pharmacology and pathophysiological implications. Clin. Physiol. 1990; 10: 503–526.
12. Naseem K.M. The role of nitric oxide in cardiovascular diseases. Mol. Asp. Med. 2005; 26: 33–65.
13. Tenopoulou M., Doulias P.T. Endothelial nitric oxide synthase-derived nitric oxide in the regulation of metabolism. F1000Res 2020; 9: 1190.
14. Shojo H., Kaneko Y. Oxytocin-induced phosphorylation of myosin light chain is mediated by extracellular calcium influx in pregnant rat myometrium. J Mol Recognit. 2001;6:401–5.
15. Butler T., Paul J., Europe-Finner N., Smith R., Chan .EC. Role of serine-threonine phosphoprotein phosphatases in smooth muscle contractility. Am J Physiol Cell Physiol. 2013;304:485–504.
16. Aguilar H.N., Mitchell B.F. Physiological pathways and molecular mechanisms regulating uterine contractility. Hum Reprod Update. 2010;16:725–44.
17. Oberg A.S., Hernandéz-Diaź S., Frisell T., Greene M.F. Almqvist C., Bateman B.T. Genetic contribution to postpartum haemorrhage in Swedish population: cohort study of 466,686 births. BMJ. 2014;349:g4984.
18. Naderi M., Mirzaei I., Yaghoubi S., Milani I., Cohan N. Postpartum Hemorrhage in Heterozygote Factor XIII Deficient Women Compared With Healthy Women. A Cross-Sectional Experience From Iran. Clin Appl Thromb Hemost. 2021;27:10760296211051714. doi: 10.1177/10760296211051714.
19. Biguzzi E., Franchi F., Acaia B., Ossola W., et al. Genetic background and risk of postpartum haemorrhage: results from an Italian cohort of 3219 women. Haemophilia. 2014;20(6):e377-83. doi: 10.1111/hae.12514.
20. Erickson E.N., Krol K.M., Perkeybile A.M., Connelly J.J., Myatt L. Oxytocin receptor single nucleotide polymorphism predicts atony-related postpartum hemorrhage. BMC Pregnancy Childbirth. 2022;22(1):884. doi: 10.1186/s12884-022-05205-w.
21. Национальный клинический протокол «Профилактика и тактика ведения послеродовых акушерских кровотечений». Ташкент, 2021. – С. 62. https://uzaig.uz/medias/media/other/265/profilaktika-taktika-krovotecheniy.pdf (дата обращения 15.11.2023)
22. Jansen Labby K., Li H., Roman L.J., Martásek P., Poulos T.L., Silverman R.B. Methylated N ω-hydroxy-l-arginine analogues as mechanistic probes for the second step of the nitric oxide synthase-catalyzed reaction. Biochemistry. 2013;52(18):3062–3073. https://doi.org/10.1021/bi301571v
23. Jaslow C.R., Carney J.L., Kutteh W.H. Diagnostic factors identified in 1020 women with two versus three or more recurrent pregnancy losses. Fertil Steril 2010;93:1234–43.
24. Klinger J.R., Kadowitz .PJ. The nitric oxide pathway in pulmonary vascular disease. Am J Cardiol 2017;120:S71–9.
25. Zammiti W., Mtiraoui N., Mahjoub T. Lack of consistent association between endothelial nitric oxide synthase gene polymorphisms, homocysteine levels and recurrent pregnancy loss in Tunisian women. Am J Reprod Immunol 2008;59:139–45.
26. Bansal C. Nitric oxide and the immune response. Nat Immunol. 2001;2(10):907–16.
27. Cella M., Farina M., Dominguez Rubio A., Di Girolamo G., Ribeiro M., Franchi A. Dual effect of nitric oxide on uterine prostaglandin synthesis in a murine model of preterm labour. Brit J Pharmacol. 2010;161(4):844–855. https://doi.org/10.1111/j.1476-5381.2010.00911.
28. Zheng D., Li C., Wu T., Tang K.. Factors associated with spontaneous abortion: a cross-sectional study of Chinese populations. Reprod Health 2017;14:33–45.
29. Devendran A., Nampoothiri S., Shewade D.G., Chatterjee S., Jayaraman B., Chandrasekharan A. Allele, genotype and haplotype structures of functional polymorphic variants in Endothelial nitric oxide synthase (eNOS), Angiotensinogen (ACE) and Aldosterone synthase (CYP11B2) genes in healthy pregnant women of Indian ethnicity. J Reprod Infert. 2015;16(4):180
30. Dutta S., Sengupta P. Defining pregnancy phases with cytokine shift. J Preg Reprod. 2017;1(4):1– 3. https://doi.org/10.15761/JPR.1000124
31. Kalinowski L., Janaszak-Jasiecka A., Siekierzycka A., Bartoszewska S., Woźniak M., Lejnowski D., et al. Posttranscriptional and transcriptional regulation of endothelial nitric-oxide synthase during hypoxia: the role of microRNAs. Cell Mol Biol Lett. 2016;21(1):16. https://doi.org/10.1186/s11658-016-0017-x.
32. NCBI Gene Database [Electronic resource]. Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/4842 (accessed 10 May 2022).
Рецензия
Для цитирования:
Ашурова У.А., Нажмутдинова Д.К., Бобоев К.Т. Полиморфизм гена NOS1 и риск развития послеродового атонического кровотечения у женщин узбекской этнической группы. Медицинская генетика. 2024;23(4):16-24. https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.04.16-24
For citation:
Ashurova U.A., Najmutdinova D.K., Boboev K.T. NOS1 gene polymorphism and risk of postpartum hemorrhage in Uzbek women. Medical Genetics. 2024;23(4):16-24. (In Russ.) https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.04.16-24